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申基上新 | 基于一步法加帽原理,T7 共转录试剂盒重磅面世!


发布时间:2022-05-11

随着COVID-19在全球肆虐,mRNA治疗成为生物医药研发领域中的“新星”,相对于传统的疫苗,新型的mRNA疫苗具有高效、低成本、副作用小等特点,广泛应用于免疫学、肿瘤学、疫苗和先天性代谢疾病等领域的临床研究。

大多数成熟的真核生物mRNA由5’帽(m7G帽)、5’非翻译区(UTR)、编码序列或开放阅读框(ORF)、3’UTR 和poly(A) 尾组成,如图1所示。

图1、mRNA结构

mRNA的5’端帽子结构(m7GpppN)是在1970年代被发现的,它的存在赋予了mRNA稳定性并使其能够有效翻译。在细胞核中,m7G帽参与mRNA加工和核输出。在细胞质中,m7G 帽参与起始蛋白翻译和mRNA“假环化”。m7G帽本质上是mRNA上的一个独特锚点,mRNA进入细胞质,CBC(帽子结合复合物)保持与mRNA帽结合并将eIF4G(支架蛋白)和eIF4A(RNA解旋酶)募集到mRNA的5’末端,再进一步招募其他起始因子启动翻译。当与mRNA帽结合时,eIF4F复合物中的eIF4G与poly(A)结合蛋白ABP1相互作用并与mRNA的poly(A) 尾结合并形成一个似圆形mRNA的结构,mRNA的“假环化”可以确保全长mRNA被翻译并增强与核糖体的持续结合能力。

另外,m7G帽通过物理保护mRNA免受 5’→ 3’ 外切核糖核酸酶的影响,从而维持mRNA的稳定性;此外,加帽的RNA可作为先天免疫系统的标记,因为固有免疫系统对没有5’端帽子结构的RNA具有较高的敏锐度。因此,mRNA的5’端帽结构对于mRNA发挥生物学功能至关重要。

根据甲基化程度的不同,m7G可形成3种类型的帽子(图2):Cap 0型、Cap 1型和Cap 2型。m7G通过三磷酸桥连到第一个核苷酸上,所形成的结构被称作Cap 0,在此基础上,若mRNA的第一个核苷酸的2’-羟基被甲基化,就会生成Cap 1。在功能方面来说,Cap 1的结构可以将mRNA标记为“自身RNA”,进而降低免疫原性,并且相较于Cap 1 RNAs,Cap 0 RNAs 体内活性很弱。另外,若mRNA第二个核苷酸的2’-羟基也被甲基化,则会形成Cap 2,目前Cap 2的功能尚不清楚。

 图2、mRNA帽子结构

  • 加帽方式

在mRNA体外合成过程中,目前可通过两种方式完成mRNA 5’末端的加帽:一种是使用加帽酶进行转录后加帽,另一种是使用帽结构类似物进行共转录加帽。

图3 酶法加帽过程示意图

牛痘病毒加帽酶催化的酶法加帽(图3)是较为传统的加帽方法,该方法需在T7聚合酶参与的IVT反应结束后,先纯化获得未加帽的mRNA,再通过牛痘病毒加帽酶(兼具RNA三磷酸酯酶活性、鸟苷酰基转移酶活性和鸟嘌呤甲基转移酶活性)产生Cap 0,再通过2’-O-甲基转移酶和S-腺苷甲硫氨酸转化为Cap 1,再次纯化获得最终的mRNA。该过程使总体工艺步骤变得复杂、繁琐,同时增加QC质检项,在mRNA的商业化生产中,势必会使成本显著上升。

图4、帽类似物研究历程

值得关注的是,帽类似物最早在1975年就已经被文献报道了其结构。经过多年的发展,帽类似物也从前一代的ARCA发展成为目前主流的三核苷酸帽类似物(CAP GAG)。通过详细整理帽类似物相关发展历程(图4),我们可以看到早在2009年三核苷酸帽类似物(CAP GAG)就已被报道可用于T7酶IVT转录制备mRNA。化学法共转录加帽,就是在T7聚合酶参与的IVT反应体系中直接加入帽类似物,实现一步法获得含Cap 1结构的mRNA,全程只需一次纯化。这种“一锅法”反应减少了制造步骤,进而有效缩短整体处理时间、简化纯化步骤,减少所需酶的数量。因此,化学法共转录加帽在工艺上相对简单,引入杂质少,必然会成为未来mRNA领域的主流技术

图5、两种加帽方式对比

  • T7共转录试剂盒

申基生物研发成功的T7 Co-transcription RNA Synthesis Kit(T7共转录试剂盒,图6)对体外转录反应体系进行了优化,本试剂盒使用T7 RNA聚合酶并以含有T7 启动子序列的线型双链DNA为模板,以NTPs和帽类似物为底物,对启动子下游的DNA序列进行转录。本试剂盒以共转录方式合成长转录本或短转录本1 μg的模板投入量可以产生150-200 μg的RNA

图6、T7共转录试剂盒

本试剂盒在具有ploy(A)的模版上可一步完成mRNA原液的体外转录,与酶法加帽对比,操作便捷、减少工艺复杂度,同时在保证加帽稳定的情况下引入更少杂质(Cap 0结构)。此外,本试剂盒利用N1-Me-pUTP替换天然的UTP,可极大降低产物的免疫原性

  • 产品组分
  • 产品特点

1.高加帽率:一步完成共转录加帽流程,加帽效率95%-100%

2.高产量:1 µg模板,可产生150-200 µg的Cap 1 mRNA

3.高活性:产生的mRNA活性更高

4.低免疫原性:N1-Me-pUTP可减少自身免疫反应

  • 推荐体系

由于T7 RNA聚合酶对GTP的亲和性更高,因此,起始转录时模板序列通常为:5’-TAATACGACTCACTATAG*GG-3’(图7),其中G*为RNA转录的第一个碱基。

图7 起始序列为GGG的DNA模板IVT示意图

针对此类模板,经我们大量实验验证,共转录体系推荐如下

在上述体系下获得产量约在50-100 μg/20 μl体系,通常所获得的产物加帽率在95%以上。如增加GTP含量可显著增加产量,但会导致加帽率下降。

注:

1. 反应体系受酶活、体系buffer、模板长度、模板序列影响较大。推荐体系中酶量需视具体试剂盒而定,不同厂家试剂盒的酶活单位定义不同,以上体系仅作参考。

2. 在不同模板、不同酶体系下,需要适当调整NTPs及模板用量。

3. 在此体系下,申基生物公司的CAP3011和CAP3111的产量相当,CAP3111的表达效果具有抗反向作用,其翻译效果明显优于CAP3011。

此外,对于共转录体系,我们更推荐起始模板序列如下:

图8 共转录推荐起始模板序列

在此模板下,共转录体系推荐如下

在上述体系下获得产量约在150-200 μg/20 μl体系,通常所获得的产物加帽率在95%以上。Cap用量对产量有所影响,推荐使用终浓度为8-10 mM。

注:

1.反应体系受酶活、体系buffer、模板长度、模板序列影响较大。推荐体系中酶量需视具体试剂盒而定,不同厂家试剂盒的酶活单位定义不同,以上体系仅参考。

2.在不同模板、不同酶体系下,需要适当调整NTPs及模板用量。

3.在此体系下,申基生物公司的CAP3011和CAP3111的产量相当,CAP3111的表达效果略微占优。

  • 产品表现

试剂盒可适配不同长度模板,更好满足不同客户需求!

本试剂盒可以获得与酶法加帽相当的Cap1 mRNA产量。

与酶法加帽相比,使用本试剂盒共转录加帽可以产生更高活性的mRNA。

申基LC-MS平台检测加帽效率,加帽效率超过95%!

申基生物作为拥有核心技术的mRNA疫苗上游原料供应商,现阶段已开发出来核苷酸、修饰性核苷酸、化学法加帽类似物等mRNA核心疫苗原料。同时,基于公司成熟的修饰性核苷酸、帽类似物类产品的研发以及规模化GMP产品的生产能力,还可以为客户定制合成具有自主知识产权的新型修饰核苷酸以及帽类似物。